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尾静脉注射前沿信息_尾静脉注射缩写(2024年12月实时热点)

内容来源：兔子在线电影所属栏目：教程更新日期：2024-12-02

尾静脉注射

小鼠的血脑屏障突没突破不清楚，我是快要变身阿凡达了，打染料针筒爆管，喷白大褂一身。我的白大褂，至此，已成艺术！尾静脉注射难度已超过流式，成为新的一生之敌[裂开][裂开][裂开]

「nycc2024」去美国ⷎew York Comic-Con只为了买漫展限定ⷥ𗦊먐觚„纽约大老鼠。 𐟐�仅打了耳标，尾巴上还有尾静脉注射后贴的创可贴，一看就是谁家实验室逃出来的[偷笑]

𐟐� 肺原位肿瘤模型构建的两种方法𐟓– 𐟔 在实验室中，我们成功建立了两种肺原位肿瘤模型，以下是详细的构建方法： 𐟓Œ 方法一：尾静脉注射接种肺转移模型 𐟔 适用于小鼠黑色素瘤等易于观察的鼠源细胞，也适用于免疫相关的肺模型。 𐟓Š 收集对数生长期的细胞，细胞液浓度应在5㗱0^5～1㗱0^6/ml之间。 ❄️ 操作过程中，细胞液应在冰上进行，以避免细胞聚球。 𐟒‰ 注射时，细胞液应缓慢推注，以减少肺栓塞的风险。 𐟕 约一周后，模型即可形成。 𐟒ᠥ悦žœ细胞中加入了LUC，可以通过活体成像进行观察。 𐟓Š 本实验室的成功率超过90%。 𐟓Œ 方法二：胸腔原位注射接种模型 𐟔 技术难度较高，对操作者的手法要求严格。 𐟔砩€‚用于人源细胞裸鼠接种，也适用于鼠源细胞的大/小鼠模型。 𐟓Š 收集对数生长期的肺肿瘤细胞，用2:1的N.S.:基质胶0℃液体制成细胞悬液，浓度不少于1㗱0^7/ml。 𐟔ꠥ𐆥𐏩𜠩𚻩†‰，暴露胸腹部并固定于手术台上。 𐟒‰ 用微量注射器抽取制备好的细胞悬液，在小鼠仰卧位左侧4～5肋间穿刺接种。 𐟔„ 穿刺深度以进入胸前后悬空感消失，略有阻力且轻微下压后有微微回弹感为宜。 𐟕 推注完毕后，停留8～10秒，轻轻抽离注射器，并用消毒好的棉签轻轻按压注射位10秒。 𐟔„ 将术后小鼠放入保温笼中复苏。 𐟒ᠥ悦žœ细胞中加入了LUC，可以通过活体成像进行观察。 𐟓Š 约7～10天后，模型即可形成。 𐟓Š 本实验室的成功率在80～85%之间。 𐟔 通过这两种方法，我们能够有效地构建鼠肺原位肿瘤模型，为肿瘤研究提供有力的支持。

卡拉胶诱导血栓，注射有讲究！ 𐟐�𐾩™脉注射诱导血栓模型 𐟓Š 向尾尖方向注射药物与向尾巴根基部注射药物的效果对比：向尾尖方向注射药物：向小鼠尾尖方向分别注射药物浓度为10mg/kg, 30mg/kg, 50mg/kg, 60mg/kg, 70mg/kg的1%k-卡拉胶溶液。24小时后，②/③血栓长度为0cm，①-0.7cm/③-0.6cm(断层)/④-0.6cm。向尾巴根基部注射药物：向小鼠尾巴根基部分别注射药物浓度为10mg/kg，30mg/kg，50mg/kg，60mg/kg，70mg/kg的1%k-卡拉胶溶液。24小时后，②/③血栓长度为0cm，①-0.7cm/③-0.6cm(断层)/④-0.6cm。 𐟓Š 不同浓度卡拉胶溶液的效果对比： 1%配药浓度：10mg/kg, 30mg/kg, 50mg/kg, 60mg/kg, 70mg/kg 0.5%配药浓度：10mg/kg, 30mg/kg, 50mg/kg, 70mg/kg 𐟓… 注射后24小时至72小时的血栓测量结果显示，50mg/kg > 70mg/kg > 10mg/kg > 30mg/kg。 𐟧Š 冰浴5分钟对实验结果的影响：在进行尾静脉注射后，立即进行冰浴5分钟，以观察对实验结果的影响。 𐟔 通过这些实验数据，我们可以更好地理解卡拉胶在不同浓度和注射方向下对小鼠血栓形成的影响，为相关研究提供有价值的参考。

阿尔茨海默病大鼠模型建立及行为学检测 𐟐�补ž‹建立：采用SD大鼠，通过1%戊巴比妥钠40/g腹腔内注射麻醉，固定于脑立体定位仪上。根据大鼠脑立体定位图谱，以前囟为零起点，前囟后3.5 mm处为穿刺点，中线右侧旁开2mm，使用牙科钻钻开颅骨。采用微量注射器自脑表面垂直进针3mm，即(AP= -3.5 mm, ML=2.0 mm, DV=3.0 mm)，双侧海马CA1区缓慢匀速注射A-40各10  (1 )，留针5 min，退针后缝合伤口。 𐟒‰ 造模后3天，开始尾静脉注射生理盐水，大鼠每只给药100/次/d，连续给药21天。 𐟧頨ጤ𘺥�〦𕋯𜚊在给药后21天，进行Morris水迷宫试验，分为定位航行实验和空间探索实验。定位航行实验：大鼠连续接受5天训练，每天4次，每次时间间隔30min，记录下大鼠从4个入水点和入水并找到平台所需要的时间，即逃避潜伏期。4次潜伏期的平均成绩作为当日的最终结果。空间探索实验：实验第6天，撤去平台，从距离平台的最远端入水后，将大鼠放入水中，记录下30s内大鼠的游泳轨迹，观察分析大鼠在目标象限的停留时间及穿越平台的次数。 𐟧젧𛄧𛇧—…理学：尼氏染色：海马组织固定后石蜡切片，进行尼氏染色，观察海马区神经细胞形态和数量。光学显微镜下计数视野下每组大鼠同一部位的神经元数量。免疫荧光染色：观察海马区A-40染色情况。荧光显微镜下计数视野下每组大鼠同一部位的阳性斑块数量。 TUNEL染色：观察神经元凋亡情况。荧光学显微镜下计数视野下每组大鼠同一部位的阳性染色数量。 𐟔젦 ‡志因子水平： RT-qPCR检测：收集海马组织，提取RNA，反转录cDNA，PCR检测caspase-3，Bcl-2和Bax的表达。 Western-blot检测：收集海马组织蛋白，检测active-caspase-3，Bcl-2和Bax的蛋白表达。

2024年10月，中山大学肖振东独立通讯在Hepatology （IF=12.9）在线发表题为“Pseudouridine synthase 1 promotes hepatocellular carcinoma through mRNA pseudouridylation to enhance the translation of oncogenic mRNAs”的研究论文。该研究通过分析TCGA数据集，发现PUS1在人类HCC标本中显著上调，并与肿瘤等级和HCC的不良预后呈正相关。 PUS1的敲低抑制了细胞增殖并减少了皮下异种移植小鼠模型中的肿瘤生长。相应地，在PUS1过表达的细胞中，观察到细胞增殖和肿瘤生长显著增加。此外，PUS1过表达显著加速了通过动态尾静脉注射建立的小鼠HCC模型中的肿瘤形成，而PUS1的敲除则减少了肿瘤形成。此外，PUS1的催化活性对于HCC肿瘤发生是必需的。在机制方面，作者通过利用载脂蛋白B mRNA编辑酶1（APOBEC1）介导的分析方法，确定了PUS1的mRNA靶标，发现PUS1将假尿苷引入一组癌基因的mRNA中，从而增强了这些mRNA的翻译能力。作者的研究突出了PUS1和假尿苷化在HCC发展中的关键作用，并提供了新的见解，即PUS1通过假尿苷化介导的mRNA翻译，增强了一组癌基因（包括胰岛素受体底物1（IRS1）和c-MYC）的蛋白质水平。「iNature」

小动物活体成像的三大关键因素解析 𐟐�芥œ訿›行小动物活体成像时，有三个关键因素会影响成像效果，分别是底物给药方式、荧光标记物的波长和动物毛发。以下是这些因素的详细解析：底物给药方式 𐟒‰ 腹腔注射：底物迅速分布全身，并能穿过包括大脑在内的血液组织屏障。注射后10～20分钟，发光信号达到峰值；60分钟内逐渐减少，直至不可检测。尾静脉注射：提供更好的再现性和5～10倍的高信号，但注射难度较高，代谢较快。建议：第一次使用荧光素酶底物成像，或更换新品牌底物时，需要进行预实验，观察底物在何时达到峰值。确定注射荧光素底物和成像之间的最佳延迟，然后将此时间用于所有实验，以标准化成像数据。荧光标记物波长 𐟌ˆ 大多数生物体内都表现出一种天然的荧光，称为自发荧光。这些荧光与标记物发射波长重叠，经激发光照射会发射出与标记物相似的荧光波长，导致低信噪比，检测灵敏度受限，甚至无法检测。例如，GFP的最大激发波长是488nm，最大发射波长是507nm，与皮肤及毛发中的胶原蛋白和弹性蛋白等成分的发射波长相近，有较高的背景信号。此外，标记物激发波长越短，散射越强，吸收越大，穿透深度越浅，越不利于体内深层部位的信号检测。建议：使用近红外波长的荧光染料，优点是更高信噪比，穿透更深，或使用iRFP作为报告基因，该荧光蛋白具有更高的亮度、光稳定性和信噪比。动物毛发 𐟐𞊃57BL/6小鼠毛发生长周期由三个阶段组成：静止期（皮肤为淡粉色）、生长期（皮肤变为深灰色或黑色）、成熟期（毛发停止生长，皮肤恢复为淡粉色）。生长期中的皮肤色素沉着是活体成像中的一个重要变量，特别是当需要对小信号变化或动物之间的差异敏感时。强烈着色的皮肤可导致90%以上的光信号衰减，这显然会导致显著的实验误差。即使是处于静止期或成熟期的小鼠，身上的毛发也会造成一个数量级的光信号衰减。建议：成像前一天，需要通过剃毛或化学脱毛来去除观察区域的毛发，以便最大限度地收集信号。通过以上措施，可以有效提高小动物活体成像的效果和准确性。

𐟐�𐥞‹老鼠实验固定设备大揭秘𐟔 𐟔즎⧴⥸‚场上最新型的老鼠实验固定设备，为你的科学研究提供便利！ 1️⃣ 𐟐€大小鼠圆筒透明固定器：专为尾静脉注射、取血实验设计，让小鼠自行从筒后端钻入，操作简单，实验更精准。 2️⃣ 𐟒‰新型电针实验大鼠固定装置：操作台配备头颈固定部和四肢固定部，确保大鼠稳定不动，实验数据更可靠。 3️⃣ 𐟔„新型大鼠尾静脉采血固定装置：筒状主体搭配铁架台，固定大鼠尾部，采血过程更顺畅，减少实验误差。 4️⃣ 𐟒Ჰg小鼠固定器：全透明亚克力材质，便于观察实验情况。堵头可调，适应不同大小小鼠，操作灵活。 5️⃣ 𐟔纫-GDQ-小鼠固定器：新研制实验器材，设计合理，装卸方便，坚固耐用，使用范围广泛。 6️⃣ 𐟒‰用于大鼠尾静脉穿刺的联用固定器：多只大鼠同时固定穿刺，尾静脉血管扩张，提高实验效率。 𐟎‰以上就是市场上备受瞩目的新型老鼠实验固定设备，根据你的实验需求选择最合适的设备吧！

𐟌Ÿ科研指南|如何设计动物实验方案𐟐튥Š觉饮ž验方案设计是科研工作中至关重要的一环。以下是一些关键步骤，帮助你设计一个成功的动物实验方案： 𐟐�Š觉馨ᥞ‹的选择首先，你需要选择合适的动物模型。这包括确定动物的数量、体重、性别和年龄等信息。例如，C67/6J小鼠，40只雌性，5-6周龄，体重约18g。 𐟔„ 对照组的设置对照组的设置是实验设计的重要部分。你可以采用以下几种方式：自身对照：同一组动物在不同时间点进行比较。组间对照：包括正常组、模型组、阳性对照组和给药组。小鼠标记法：通过染色标记法或耳标签法进行标记。例如：正常组、模型组（CUMS干预）、模型组+药物低剂量、模型组+药物中剂量、模型组+药物高剂量、模型组+阳性药物。 𐟓 剂量组别的设计药效学一般需要设计三个剂量组，如模型组+药物低剂量、模型组+药物中剂量、模型组+药物高剂量。剂量组别的设置原则包括量效曲线和等比级数递增，例如2mg/kg、4mg/kg、8mg/kg。 𐟒‰ 给药方式确定给药次数（如每天一次或每周两次），选择合适的给药方式，包括灌胃、腹腔注射、尾静脉注射和皮下注射。此外，还需要选择合适的溶剂，如DMSO、吐温或橄榄油。 𐟓Š 药效评价指标药效评价指标包括观察指标（如体重、粪便、毛发、摄食和饮水）和实验室检测指标（如血常规、生化检测评估心肝肾、B超、CT、核磁、X光、血流监测、生理监测仪、动物运动与平衡能力、动物抑郁与焦虑状态、动物学习与认知能力、动物社交能力等）。切片染色也是重要的评价方法，如HE染色观察目标组织，特殊染色检测纤维化、成骨分化血管钙化等，免疫组化检测标志物。通过以上步骤，你可以设计一个全面而有效的动物实验方案，为你的科研工作打下坚实的基础。

肿瘤微环境响应的纳米药物：精准治疗新策略肿瘤微环境响应的纳米药物在精准医疗领域展现出了巨大的潜力。通过利用纳米药物的粒径可调特性，可以实现对肿瘤的精准图像引导治疗，同时减少副作用。然而，如何在肿瘤微环境中实现纳米粒径的可调性，仍然是纳米治疗领域的一个挑战。最近，科学家们设计了一种肿瘤微环境ROS（活性氧物种）响应性聚集策略，旨在实现图像引导的精准肿瘤治疗。这种ROS响应的纳米治疗体系（Au-MB-PEG NPs）由修饰了次氯酸（HOCl）探针的金纳米粒子（AuNPs）组成。通过响应HOCl，改变其表面电荷并实现Au NPs的聚集，同时释放出光敏剂亚甲基蓝（MB），用于光动力治疗。在肿瘤微环境中，AuNPs的聚集不仅提高了其在肿瘤中的聚集度，还能使其吸收峰红移，从而实现近红外光激发光声成像（PAI）和光热治疗（PTT）。这一设计在肿瘤的诊断和治疗中取得了优异的效果。通过尾静脉注射Au-PEG NPs（A）和Au-MB-PEG NPs（B）后，HepG2荷瘤小鼠的光声成像显示，Au-MB-PEG NPs在肿瘤部位的聚集明显增加。不同处理组的荷瘤小鼠肿瘤生长曲线、体重变化图以及治疗前后的对照图片均表明，该体系能够有效抑制肿瘤的生长。此外，通过HE染色和TUNEL染色，科学家们发现Au-MB-PEG NPs能够显著减少肿瘤细胞的存活率，并诱导细胞凋亡。这一结果表明，该体系在肿瘤治疗中具有显著的疗效。总的来说，这项研究设计了一种刺激性应答纳米聚集体系，为肿瘤的诊断和治疗提供了一种新的思路。更重要的是，这种ROS响应聚合策略可以应用于其他纳米材料治疗体系，推动了肿瘤治疗纳米药物的进一步发展。

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